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瘦素_leptin_对猪脂肪细胞脂滴相关蛋白和脂肪生成相关酶mRNA表达的影响

来源:五一七教育网
35(5):509~515,2009浙江大学学报(农业与生命科学版) 

JournalofZhejiangUniversity(Agric1&LifeSci1)

文章编号:100829209(2009)0520509207DOI:10.3785/j.issn.100829209.2009.05.006

瘦素(leptin)对猪脂肪细胞脂滴相关蛋白和

脂肪生成相关酶mRNA表达的影响

张明涛,杨永青,鞠大鹏,杨公社

(西北农林科技大学动物科技学院,陕西杨凌712100)

摘 要:以体外培养的猪原代脂肪细胞为研究对象,研究瘦素(leptin)对猪脂肪细胞脂滴相关蛋白

(perilipin、)mRNA表达的影响.用0、ADRP、TIP47)和脂肪生成相关酶(FAS、SCDα、ACCα50、100、150nmol!L-1leptin分别处理脂肪细胞3、6h,油红O染色鉴定,RT2PCR检测.结果表明,当用150nmol!L-1leptin处理猪脂肪细胞3h时perilipinmRNA表达显著降低,用50、100nmol!L-1leptin处理3h

时PPARγ、ACCα、FASmRNA表达降低;当用50、100nmol!L-1leptin处理猪脂肪细胞6h时

perilipin、SCDα、PPARγ、FAS、ACCα、LXRαmRNA表达降低,50、100、150nmol!L-1leptin处理显

著下调ADRPmRNA的表达,100、150nmol!L-1leptin处理TIP47mRNA表达升高.以上结果提示,

50、100nmol!L-1leptin可能通过抑制PPARγ和LXRα来抑制perilipin、SCDα、FAS、ACCαmRNA的表达,从而猪原代培养脂肪细胞中的脂质代谢,而150nmol!L-1leptin可能引起leptin

的抵抗进而削弱leptin的作用.

关 键 词:瘦素;猪脂肪细胞;perilipin;FAS;SCDα;ACCα中图分类号:Q813   文献标志码:A

ZHANGMing2tao,YANGYong2qing,JUDa2peng,YANGGong2she(CollegeofAnimalScienceandTechnology,NorthwestA&FUniversity,Yangling,Shaanxi712100,China)

EffectofleptinonporcineadipocytesmRNAexpressionoflipiddropletrelatedproteinandadipogeneticrelatedenzyme.JournalofZhejiangUniversity(Agric1&LifeSci1),2009,35(5):5092515

Abstract:ToinvestigatetheeffectofleptinonporcineadipocytesmRNAexpressionoflipiddroplet),therelatedprotein(perilipin,ADRP,TIP47)andadipogeneticrelatedenzyme(FAS,SCDα,ACCαadipocytesweretreatedfor3,6hwith0,50,100,150nmol!L-1leptin,andthenidentifiedwithredoilstainingandtestedbysemiquantitativeRT2PCR.Theresultshowsthat,whentheadipocyteswastreatedwith150nmol!L-1leptinfor3h,theexpressionofperilipinmRNAwasdecreasedremarkably;treatedwith50and100nmol!L-1leptinfor3h,theexpressionofPPARγ,ACCα,FASmRNAweredecreased(P<0.05);whentheadipocyteswastreatedwith50,100nmol!L-1leptinfor6h,the

γ,FAS,ACCα,LXRαmRNAweredecreased;treatedwithexpressionofperilipin,SCDα,PPAR

50,100,150nmol!L-1leptinfor6h,theexpressionofADRPmRNAwasdecreased;treatedwith100,  收稿日期:2008208212

基金项目:国家高技术研究发展计划“863\"资助项目(2006AA10Z138).

()作者简介:张明涛1982—,男,陕西临潼人,硕士研究生,主要从事生物技术与动物育种方面的研究.E2mail:zmt3404@

yahoo.com.cn.

通信作者:杨公社,男,教授,主要从事生物技术与动物育种方面的研究.Tel:029287091017;E2mail:gsyang999@hotmail.com.

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浙江大学学报(农业与生命科学版)

第35卷 

150nmol!L-1leptinfor6h,theexpressionofTIP47mRNAwasincreased.Thefindingsabovesuggestedthat50,100nmol!L-1leptinmayinhibittheexpressionofperilipin,SCDα,FAS,ACCαmRNAthroughinhibitingPPARγandLXRαtoregulatelipidmetabolismintheporcineadipocytes,and150nmol!L-1leptinmaycauseleptinresistance,andthenreducedtheeffectofleptin.Keywords:leptin;porcineadipocytes;perilipin;FAS;SCDα;ACCα

  Leptin(瘦素)是ob基因的表达产物,由脂肪细胞分泌,与下丘脑leptin受体结合,抑制食欲中枢,减少进食量;并通过兴奋交感神经系统,促进脂肪分解,产热增加,从而发挥降低体重的功能.研究表明,leptin除通过神经系统作用外,也可以直接作用于某些组织或细胞,与代谢相关的多种基因表达,例如脂肪生成相关酶和脂滴胞被蛋白(perilipin,PLIN).Perilipin有4种亚型,根据结构将其分为A、B、C、D,perilipinA最多,在脂肪组织和类固醇生SCD是催化细胞中饱和脂肪酸(SFA)转化为

单不饱和脂肪酸(MUFA)的限速酶.研究表明,SCD2/2小鼠和ACC2/2小鼠有类似PLIN2/2小鼠的症状,都表现出以增加能量支出的方式,抵抗饮食诱导的肥胖.同时,脂肪生成的重要调

)控因子肝脏X受体(liverXreceptorα,LXRα和过氧化体增殖活化受体γ(peroxisome

proliferatorsactivatedreceptorγ,PPARγ)也在脂代谢中起重要的作用.但有关猪leptin及perilipin、FAS、SCD、ACC方面的研

成细胞中表达.PerilipinA在甘油三酯的水解过程中有双重作用,在基础状态下此蛋白的磷酸化水平很低,作为屏障覆盖在脂滴的表面,将甘油三酯与胞浆中的HSL隔离开,保护甘油三酯免受水解;在刺激状态下,perilipinA改变构象促进脂解酶接近并水解甘油三酯[122].脂肪

细胞相关蛋白(adiposedifferentiation2relatedprotein,ADRP)在哺乳动物几乎所有类型的细

究较少.为此,本研究用leptin处理猪脂肪细胞,探讨leptin对猪脂肪细胞perilipin、ADRP、TIP47、FAS、SCD、ACC、LXR、PPARγ的作用,为研究脂肪型猪和瘦肉型猪不同血清leptin水平及肥胖相关疾病提供理论参考.

1 材料与方法

111 材 料

胞中均有表达,因此其在脂滴的合成方面比perilipin有更广泛的作用.但是ADRP不能介

  DMEM/F12、I型胶原酶为美国Inventrogen公司产品,血清为兰州民海公司产品,重组鼠leptin为PeproTech公司产品,RNAisoReagent

导激素敏感脂酶从胞浆到脂滴表面的转位,因

而不能代替perilipin的功能.TIP47(tail2interactingprotein47ku,TIP47)作为与ADRP、perilipin的同一家族报道较少.Leptin

购于TaKaRa公司,反转录试剂盒和Taq酶为

MBI公司产品,DNTP(10μmol!L-1)为博大泰克公司产品,1日龄3头长白猪购自西北农林科技大学种猪场.

112 猪前体脂肪细胞培养

亦能脂肪生成的3个主要酶:脂肪酸合酶

(fattyacidsynthase,FAS)、硬脂酰辅酶A去饱和酶1(stearoyl2CoAdesaturease1,SCD21)和乙酰辅酶A羧化酶(acetyl2CoAcarboxylase,ACC).FAS是一种基本的代谢酶

  方法详见文献[3].

113 RT2PCR检测脂滴表面蛋白和脂肪生成

类,催化乙酰CoA和丙二酸单酰CoA合成软

脂酸(16:0),脂肪酸合酶的表达量和活性的高低对动物体脂沉积具有重要意义.ACC催化乙酰辅酶A形成丙二酸单酰辅酶A,后者在脂肪酸合成和代谢中起重要作用.ACCα主要在脂肪生成活跃的肝脏、脂肪组织和乳腺中表达.

相关酶基因mRNA的表达

  将猪脂肪细胞培养至细胞分化中期(第5

天),更换培养液,分别以0、50、100、150nmol!L-1leptin处理3h和6h,用RNAisoReagent

试剂分别提取总RNA,反转录.PCR引物见表1.PCR产物通过1%琼脂糖凝胶电泳检测,通

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 第5期张明涛,等:瘦素(leptin)对猪脂肪细胞脂滴相关蛋白和脂肪生成相关酶mRNA表达的影响

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过Wealtec凝胶成像系统拍照,并用Dophin21D凝胶分析软件分析,结果用目的基因和β2

actinmRNA电泳带吸光度的比值表示.每组

实验重复3次.

表1 PCR引物参数

Table1 ParameterforPCRprimers

基因β2actinγPPAR

PLINADRPTIP47LXRαFASSCDαACCα

   引  物

F:5’ACTGCCGCATCCTCTTCCTC3’R:5’CTCCTGCTTGCTGATCATC3’F:5’TGACCCAGAAAGCGATGC3’R:5’ATGGCACTTTGGTAGTCCTG3’F:5’CCCTGGTGGCGTCTGTATG3’R:5’GCGGCATATTCAGCAGTGTC3’F:5’GTAGACCAGTACCTCCCTC3’R:5’GGTAACCCTCGGATGTTG3’F:5’GGCAGGATCAGAGCTACTTCG3’R:5’GTGAATGTCTGGGACTCAACC3’F:5’GCGGCAAGAGGAGGAACAGG3’R:5’AATCGCAGAGGTCTTTAGGAGGG3’F:5’TCCAAGCAGGCGAACACGAT3’R:5’GCCGTGTCTATGGTGATGCTGG3’F:5’TCTGGGCGTTTGCCTACTATCT3’R:5’TCTTTGACGGCTGGGTGTTT3’F:5’GTTGCACAAAAGGATTTCAG3’R:5’CGCATTACCATGCTCCGCAC3’

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114 油红O染色

  取分化至第6天的猪脂肪细胞,弃去培养液,用PBS洗3次,10%甲醛固定30min,PBS漂洗3次,然后用油红O工作液染色40min后移去染色液,PBS漂洗3次,镜检.115 统计分析  用SPSS1310软件进行统计分析,实验数据以平均数±标准差表示,各组数据间采用LSD进行差异显著性检验,用One2wayANOVA进行方差分析.

2 结 果

  A:培养2d的猪前体脂肪细胞;B:培养4d的猪脂肪细

211 猪原代脂肪细胞培养及油红O染色鉴定

胞;C:培养5d的猪脂肪细胞;D:培养6d的猪脂肪细胞经油红O染色鉴定.

脂肪细胞  接种2d后多数细胞形态呈长梭形、星形和不规则三角形(图1A);培养至第4天脂肪细胞汇合(图1B);培养至第5天脂肪细胞中有脂滴出现(图2C).经油红O染色,可见脂滴被亲脂的油红O着色而呈橘红色(图1D),说明培养的细胞为脂肪细胞.

图1 原代培养的猪脂肪细胞

Fig.1 Porcineprimaryadipocytes

212 Leptin对猪原代脂肪细胞perilipin、

ADRP、TIP47mRNA表达的影响

  用50、100nmol!L-1leptin处理猪原代培

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浙江大学学报(农业与生命科学版)

第35卷 

养细胞3h,perilipinmRNA表达差异不显著(P>0105),用150nmol!L-1leptin处理时perilipinmRNA表达显著降低(P<0101)(图2A(a)).与对照组相比,用50、100nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞6h,perilipinmRNA表达显著降低(P<0101).其中,100nmol!L-1leptin处理的perilipinmRNA表达显著低于50nmol!L-1(P<0105),但用150nmo!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞6h时

perilipinmRNA表达与对照组相比差异不显

213 Leptin对猪原代脂肪细胞FAS、SCDα、

ACCαmRNA表达的影响

  用50、100nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞3h时ACCαmRNA表达显著降低(P<0105).与对照组相比,100nmol!L-1leptin处理3hACCαmRNA显著降低(P<0101),其中100nmol!L-1leptin处理ACCαmRNA显著低于50nmol!L-1处理组(P<0101),而150nmol!L-1leptin处理对ACCαmRNA没有影响(图3A(a)).与对照组相比,50、100nmol!L-1leptin处

著(图2B(a)).

  用0、50、100、150nmol!L-1leptin处理猪脂肪细胞3h时ADRPmRNA表达差异不显著(图2A(b)).与对照组相比,50、100、150nmol!L-1leptin处理6h显著下调ADRPmRNA表达(P<0101),50nmo!L-1leptin处理6hADRPmRNA的表达比100和150nmol!L-1处理组显著降低(P<0105)(图2B(b)).  用0、50、100、150nmol!L-1leptin处理猪原代培养脂肪细胞3h时TIP47mRNA表达差异不显著.50nmol!L-1leptin处理猪脂肪细胞6h时TIP47mRNA表达显著降低(P<0105)(图2A(c)).然而,与对照组相比,用100、150nmol!L-1leptin处理6h时,TIP47mRNA表达显著升高(P<0101)(图2B(c)).

理猪原代脂肪细胞6h显著下调ACCαmRNA的表达(P<0105).50nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞6h比100nmol!L-1处理组显著下调ACCαmRNA的表达(P<0101),而150nmol!L-1leptin处理6h与对照组差异不显著(图3B(a)).

  与对照组相比,50nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞3h,SCDαmRNA表达上调,但是差异不显著.100与150noml!L-1leptin处理组与对照组差异不显著,但与50nmol!L-1处理组相比显著下调SCDαmRNA的表达(P<0105)(图3A(b)).50、100nmol!L-1leptin处理6h显著下调SCDαmRNA表达(P<0101),150nmol!L-1leptin处理6h与对照组SCDαmRNA表达差异不显著(图3B(b)).

β  A:Leptin处理3h的perilipin、ADRP、TIP47、2actin

mRNA表达情况;B:Leptin处理6h的perilipin、ADRP、

β  A:Leptin处理3h的ACCα、SCDα、FAS、2actinmRNA的β表达情况;B:Leptin处理6h的ACCα、SCDα、FAS、2actin

mRNA的表达情况.0、50、100、150分别表示leptin处理浓度/(nmol!L-1).

βTIP47、2actinmRNA表达情况.0、50、100、150分别表示

leptin处理浓度/(nmol!L-1).

图2 RT2PCR法检测leptin对猪脂肪细胞perilipin、

ADRP、TIP47mRNA表达的影响

Fig.2 EffectofleptinonmRNAlevelsofperilipin,ADRP

andTIP47inpigadipocytes

图3 RT2PCR法检测leptin对猪脂肪细胞ACCα、SCD

α、FASmRNA表达的影响

Fig.3 EffectofleptinonmRNAlevelsofACCα,SCDαand

FASinpigadipocytes

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  50、100、150nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞3h时FASmRNA表达显著降低(P<0101),其中150nmol!L-1处理FASmRNA表达显著高于50和100nomol!L-1处

3hLXRαmRNA表达差异不显著(图4A(b)).与对照组相比,50、100nmol!L-1leptin

理(P<0105)(图3A(c)).与对照组相比,50、100nmol!L-1leptin处理6hFASmRNA表

处理猪脂肪细胞6hLXRαmRNA显著降低(P<0105),150nmol!L-1leptin处理6hLXRαmRNA表达差异不显著(图4B(b)).

达显著降低(P<0101),150nmol!L-1leptin处理6hFASmRNA表达差异不显著(图3B(c)).

214 Leptin对猪原代脂肪细胞LXRα和

PPARγmRNA表达的影响

3 讨 论

  肥胖是由于体内ob基因的突变导致不能生成leptin而引起的,证实leptin具有降低体脂含量和维持体重的功能.本实验表明50、100nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞6h下调perilipinmRNA的表达,而150nmol!L-1leptin处理6hperilipinmRNA表达与对照组差异不显著,可能是leptin通过OBR2JAK2

STAT3启动SOCS3,从而抑制leptin受体及

  与对照组相比,50、100、150nmol!L-1leptin处理猪脂肪细胞3h显著下调PPARγmRNA的表达,差异显著(P<0101).其中,150nmol!L-1leptin处理组PPARγmRNA表达显著高于50、100nmol!L-1leptin处理组(P<0101),100nmol!L-1leptin处理组比50nmol!L-1leptin处理组显著下调PPARγmRNA的表达(P<0101)(图4A(a)).与对照

JNK,而leptin对脂肪细胞的作用是通过其受

组相比,50、100nmol!L-1leptin处理猪脂肪细胞6h显著下调PPARγmRNA的表达(P<0101);100nmol!L-1leptin处理组比50nmol!L-1处理6h组显著下调PPARγmRNA的表达(P<0105);与对照组相比,150nmol!L-1leptin处理6hPPARγmRNA表

体发挥作用的,从而导致leptin抵抗.2003年Ke等[4]发现leptin转基因小鼠和注射leptin到leptin缺失小鼠的perilipinmRNA降低,进而perilipin蛋白降低,本实验与此一致.但是关于leptinperilipinmRNA表达的具体机制还需要进一步研究.  本研究发现50、100、150nmol!L-1leptin处理6h显著降低ADRPmRNA的表达,与2003年Ke等[4]的发现不一致,但是ADRP降低趋势显著低于perilipin,perilipin和

[5]

ADRP存在互补效应,与Yamaguch等的报道一致,另外也可能是由于leptin转基因小鼠遗传背景的差异.同时Kovsan等[6]发现ADRP和perilipin蛋白降解途径的不同也说明两者存在不同的途径.Sztalryd等[7]2006年发现ADFP(ADRP)缺失小鼠的成纤维细胞可以形成脂滴,而且FA吸收和脂解没有改变,但是TIP47在脂滴表面大量表达.另外,100、150nmol!L-1leptin处理6h与对照组相比TIP47mRNA表达升高,这与上述ADRP缺失小鼠成纤维细胞TIP47蛋白表达量升高结果类似.由以上结果表明,PAT家族(perilipin,ADRP,TIP47)之间可能存在互补效应,但是关于leptinTIP47之前尚未见报道.

达差异不显著(图4B(a)).

  与对照组相比,100、150nmol!L-1leptin处理猪原代脂肪细胞3hLXRαmRNA表达显著降低(P<0101),50nmol!L-1leptin处理

β  A:Leptin处理3h的PPARγ、LXRα、2actinmRNA的β表达情况;B:Leptin处理6h的PPARγ、LXRα、2actin

mRNA的表达情况.0、50、100、150分别表示leptin处理浓度/(nmol!L-1).

图4 RT2PCR法检测leptin对猪脂肪细胞PPARγ、

LXRαmRNA表达的影响

Fig.4 EffectofleptinonmRNAlevelsofPPARγandLXR

αinpigadipocytes

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浙江大学学报(农业与生命科学版)

第35卷 

  Nagai等[8]2004年报道perilipin是PPARγ的靶基因.因而本实验也检测了PPARγmRNA的表达.leptin处理猪原代脂肪细胞3h,PPARγmRNA表达趋势与leptin处理6hperilipinmRNA表达趋势基本一致,即50、100nmol!L-1leptin下调PPARγmRNA表达,150nmol!L-1leptin处理的

PPARγmRNA表达与对照组差异不显著.这

养脂肪细胞中的脂质代谢,而150nmol!L-1

leptin可能引起leptin抵抗进而削弱leptin的作用.本研究通过leptin短时间处理体外培养的猪原代培养脂肪细胞与体内有所差异,而且leptin猪脂肪细胞终末基因的上游机制报道甚少,因而有待进一步研究.

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究发现leptin特异性抑制SCD21mRNA和肝SCD21酶活,表明下调SCD21表达、抑制SCD21酶活性是leptin发挥代谢作用的一个重要途径,本实验与此一致.50、100nmol!L-1leptin处理3和6h,FAS和ACCαmRNA表达显著低于对照组.Gallardo等[12]2007年发现大鼠脑内注射leptin削弱了成对饲养对FAS、ACC、SCD21mRNA的上调作用,本实验与此相似.同时,我国地方品种脂肪型猪其饱和脂肪酸高于瘦肉型猪及合成总脂及脂肪酸的能力比长白猪高2~3倍[13214].此外,脂肪型猪血浆leptin是瘦肉型猪的3123倍[15],进一步说明我国脂肪型猪种可能存在leptin抵抗或者其他遗传背景.以上研究结果说明PPARγ和LXRα在脂肪细胞中有很重要的作用,且分别是perilipin和FAS、SCDα、ACCα的上游基因,因而提示,50、100nmol!L-1leptin可能通过抑制PPARγ和LXRα来抑制perilipin、SCDα、FAS、ACCαmRNA的表达从而猪原代培

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英国培育出可抑制蓝藻毒性的无害细菌

英国研究人员9月7日说,他们培养出一些新型细菌,可以有效分解蓝藻释放到水中的毒素,且不会对环境造成有害影响.

  英国罗伯特戈登大学研究人员在当天举行的英国“普通生物学学会\"会议上报告了这一成果.他们利用节杆菌、短杆菌和红球菌等种类的细菌,培育出了约10种新型细菌,可有效分解蓝藻释放的微囊藻毒素.研究人员在含蓝藻的水中试验了其中6种细菌,结果显示它们都能有效降低水中的微囊藻毒素含量.

  据介绍,蓝藻在淡水和海水中都可以存活,在全球江河湖海中广泛存在.它会向水中释放微囊藻毒素,这种物质会损害人和动物的肝脏,如果长期饮用这种水,有可能导致肝衰竭或肝癌.另外,蓝藻大规模繁殖会造成水中毒素含量过高,进而导致大量鱼虾死亡.

  研究人员说,常规的净水措施,如沉淀、过滤和氯化消毒等,都无法去除水中的微囊藻毒素,而一些高级净水措施的成本又偏高,不利于广泛使用.本次研究培养出的新型细菌提供了一种便宜可靠的解决方案,并且它们不会对环境造成有害影响.

———原载《新华网》,2009209207    

黄堃文        

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